Salud y bienestar

Mitos y errores frecuentes en la toma de muestras sanguíneas: lo que todo clínico debe evitar

Por MVZ, MSc. Carmiña Salazar, docente de Patología Clínica – UAGRM

La precisión en el diagnóstico veterinario comienza en la fase preanalítica, que abarca la toma, manipulación y conservación de las muestras. Errores en esta etapa pueden afectar los resultados y derivar en tratamientos incorrectos. En este artículo se desarrollan los mitos y errores más frecuentes en la toma de muestras sanguíneas que comprometen la calidad de los análisis hematológicos y bioquímicos.

Mito 1: “Cualquier tubo sirve para cualquier análisis”

Cada tipo de tubo cumple una función específica:

  • Tapón rojo: sin anticoagulante; diseñado para obtener suero. Ideal para bioquímica clínica y serología.
  • Tapón morado (EDTA): contiene anticoagulante para hemogramas y estudios celulares; no debe usarse para análisis bioquímicos.
  • Tapón celeste (citrato de sodio): empleado para pruebas de coagulación.

Una elección incorrecta puede invalidar los resultados y llevar a diagnósticos erróneos o tratamientos inadecuados.

Error crítico: Hemólisis in vitro

Principales causas:

  • Uso de agujas muy finas
  • Succión fuerte con la jeringa
  • Manejo brusco de los tubos
  • Temperaturas extremas
  • Demora en la toma de muestra

Consecuencias: falsos eritrocitos bajos y hematocrito alterado.

Soluciones técnicas: utilizar agujas 21 o 20G, realizar un muestreo suave y cuidadoso y proceder al análisis inmediato.

Error: Volumen inadecuado de la muestra

Una muestra insuficiente altera la proporción entre sangre y anticoagulante, generando coágulos microscópicos o hemólisis. Este error representa hasta el 25 % de las muestras rechazadas en laboratorios veterinarios.

Recomendación: respetar siempre los volúmenes mínimos requeridos según el tipo de tubo y análisis solicitado.

Error: Muestra con coágulos

Puede originar:

  • Plaquetas falsamente bajas (seudotrombocitopenia)
  • Conteo disminuido de leucocitos y eritrocitos
  • Hematocrito alterado

La correcta homogeneización de la sangre con el anticoagulante y la manipulación inmediata del tubo son esenciales para evitarlo.

Mito 2: “El tiempo de refrigeración no afecta la vida útil de la muestra”

La refrigeración solo retrasa, pero no detiene, la degradación celular y enzimática.
Las muestras destinadas a hemogramas deben procesarse dentro de las 6 a 12 horas posteriores a su obtención.

Mito 3: “El estrés del animal no afecta la muestra”

El estrés puede alterar notablemente los parámetros hematológicos. La pseudoneutrofilia por estrés es un hallazgo frecuente en pacientes mal manejados durante la toma.

Mejores prácticas: contención suave, ambiente tranquilo, personal capacitado y, cuando sea necesario, sedación ligera para garantizar la seguridad y la calidad de la muestra.

Mito 4: “La técnica de punción no influye en el resultado”

La técnica empleada incide directamente en la calidad de la muestra.
Una punción traumática puede causar hemólisis y liberar potasio, LDH, fósforo y enzimas, alterando los valores séricos.

Técnica correcta:

  • Preferir la vena yugular
  • Mantener asepsia rigurosa
  • Usar el ángulo de punción adecuado
  • Aplicar presión suficiente post-extracción

Errores en la conservación del suero

  • La hemoglobina libre interfiere con las lecturas colorimétricas.
  • El suero ictérico debe protegerse de la luz para evitar degradación de bilirrubina.

Mito 5: “No es necesario que el animal esté en ayunas”

La lipemia posprandial es uno de los principales interferentes en bioquímica clínica.
Provoca valores falsamente elevados de triglicéridos y proteínas totales.

Recomendación: ayuno de 8 a 12 horas previo a la toma de muestra.

Error: Procesamiento retrasado

El tiempo de procesamiento de la muestra es crítico:

  • Primeros 30 minutos: óptimo para centrifugar y separar el sero.
  • Entre 30 y 60 minutos: comienza la degradación enzimática.
  • Más de 2 horas: puede producirse hemólisis espontánea y resultados no confiables.

Mejor práctica: centrifugar de inmediato, analizar cuanto antes y conservar a 4 °C sin congelar.

Impacto de los errores preanalíticos

El 30 % de las muestras se rechazan por hemólisis o lipemia. Implementar protocolos de ayuno y técnicas estandarizadas reduce los errores en un 5 % y puede mejorar la precisión diagnóstica hasta en un 85 %.
Esto refuerza que una muestra de calidad es el pilar de un diagnóstico certero.

“Eliminar mitos y corregir errores sistemáticos salva vidas animales y mejora la confianza en nuestros servicios”, destacó la Dra. Salazar.

La precisión en la toma de muestras no es un detalle técnico menor, sino una responsabilidad ética y profesional que define la calidad de la medicina veterinaria moderna.

Carmen Liceth Lola Vargas

Carmen Liceth Lola Vargas

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